Biomineralizacja

Biomineralizacji jest procesem, za pomocą którego organizmy żywe wytwarzać mineralnych , często w celu utwardzenia i usztywnić ich tkanki, w celu wytworzenia zmineralizowanej tkanki. Termin ten oznacza również „każdą strukturę mineralną wytwarzaną przez żywy organizm”

Powszechne, starożytne i różnorodne zjawisko w życiu

Skamieniałości pokazują, że organizmy zdolne do wytwarzania zmineralizowanych szkieletów żyją w oceanach od co najmniej 550 milionów lat.

Te sześć królestw świata żywego obejmują taksonów stanie biosynthesizing minerałów, a ponad 60 różnych minerałów zostały zidentyfikowane w tych organizmach.

Są one używane głównie do produkcji egzoszkieletów lub endoskeletonów i często mogą odgrywać ważną rolę w detoksykacji ( metale ciężkie lub toksyczne metaloidy mogą być tam przynajmniej czasowo „obojętne”).

Odgrywają również ważną rolę w cyklach biogeochemicznych i stabilizowaniu klimatu Ziemi jako główny pochłaniacz dwutlenku węgla (tworzenie się kredy i skał pochodzenia koralowego ).

Przykłady cząsteczek biomineralnych

Te minerały często tworzą cechy strukturalne, takie jak muszle i kości u ssaków i ptaków lub szkielet ryb.

Typologie i procesy biomineralizacji

Wyróżnia się dwa główne typy procesu mineralizacji przez organizmy żywe:

Mechanizmy biomineralizacji u zwierząt

W wapiennych gąbkach (Porifera, Calcarea)

Do gąbki tych klasy Calcarea wytwarzają bogatych w magnez drzazg kalcytu. Te drzazgi mają od jednego do pięciu promieni u współczesnych gatunków, ale u niektórych gatunków paleozoicznych może wzrosnąć do ośmiu. Drzazgi w wapiennych gąbkach są otoczone błoną materii organicznej, która rozwija się synchronicznie z drzazgą. Błony te powstają w wyniku gromadzenia się włókien kolagenowych z mezohylu i często wiążą ze sobą drzazgi.

Tworzenie drzazg rozpoczyna się wokół punktu zarodkowania, z którego wyspecjalizowane komórki (sklerocyty) będą wydzielać jony niezbędne do biomineralizacji w środowisku zewnątrzkomórkowym. Co najmniej dwie komórki są odpowiedzialne za wzrost każdego promienia lub aktyny. Komórka „założycielska”, która ją wydłuża, a druga (komórka „zagęszczająca”) zwiększa jej średnicę. Ta forma wzrostu wyjaśnia, dlaczego w drzazgach można zaobserwować słoje.

Spikule reagują optycznie jak monokryształy, ale w rzeczywistości są to zespoły bardzo małych kryształów (rzędu nanometrów), których orientacja jest bardzo kontrolowana, co pokazują obserwacje pod mikroskopem sił atomowych wykonane przez Sethmana i in. (2006).

Inne gąbki tworzą drzazgi z silikonem. Mają inny mechanizm ich tworzenia. Spikule zaczną rosnąć wewnątrzkomórkowo. Sklerocyt najpierw utworzy wyobrażenie, w którym utworzy się drzazga. Pierwsza faza polega na utworzeniu osiowego kanału materiału organicznego, następnie spikula rozwinie warstwę krzemionkową wokół osiowego włókna. W końcu przebije komórkę i stanie się zewnątrzkomórkowa.

W ascidians

Dwa rodzaje biomineralizowane elementy znajdują się w pojedynczych żachwy zlecenia Stolidobranchia ( tunicata , żachwy ): z drzazg ciała i tych z tuniką. Obecne w organizmie kosteczki mają różne kształty, jak pręciki kolczaste u Herdmania momus lub „pióropusz” u Pyura pachydermatina i składają się odpowiednio z waterytu i kalcytu, dwóch form węglanu wapnia. Niemniej mechanizm ich powstawania pozostaje podobny. Rzeczywiście, rozwijają się one pozakomórkowo w zatokach krwi, głównie w rejonie skrzelowym i prawdopodobnie odgrywają rolę w strukturalnej integralności tych ostatnich. Rzeczywiście, region ten jest poddawany siłom prądów i miałby tendencję do zapadania się bez kosteczek słuchowych. Wzrost jest kontrolowany przez sklerocyty z dużą liczbą pseudopodiów, które są bardzo ściśle połączone ze sobą przez interdigitację. Wzrost jest również ciągły przez całe życie zwierzęcia, czego dowodzą eksperymenty inkubacji z kalceiną.

Kosteczki słuchowe tuniki różnią się od kości ciała, ponieważ nie powstają tam, gdzie mają się znajdować. Podobnie jak kosteczki kostne ciała, są one wytwarzane zewnątrzkomórkowo w ścianie naczyń krwionośnych (w tym przypadku błony śluzowej), ale czas trwania wzrostu jest z góry określony i po jego zakończeniu migrują do naskórka błony śluzowej, tworząc warstwy podskórnej i tracą otoczkę sklerocytów. U H. momus , oprócz swojej roli strukturalnej, kosteczki słuchowe tuniki pełnią rolę ochronną przed drapieżnictwem, krzyżując się z tuniką i nadając zwierzęciu ostrą konsystencję. 

U szkarłupni

Wszystkie szkarłupnie tworzą elementy endoszkieletowe z węglanem wapnia. Pierwiastki te są pochodzenia mezodermalnego i są ściśle związane ze skórą zwierzęcia. Wszystkie komórki odpowiedzialne za ich powstawanie pochodzą z tego samego typu: komórki pierwotnej mezenchymu. Ten typ komórek pochodzi z czterech mikromerów najbardziej na biegunie wegetatywnym podczas 16-komórkowego etapu rozwoju embrionalnego u jeżowców purpurowych. Po ich wtargnięciu te ostatnie połączą się ze sobą poprzez rozszerzenia ich błony (filopodia), tworząc syncytium. Osady mineralne są ograniczone przez zamkniętą przestrzeń i izolowane od reszty środowiska zewnątrzkomórkowego. Formy, jakie przyjmują szkieletowe elementy szkarłupni są bardzo zróżnicowane, od igieł jeżowców po małe „stoliki” strzykw, w tym pedicellaria. Jednak jednym wspólnym punktem jest obecność porowatości (lub stereom) i stosunkowo duża ilość magnezu.

U niektórych gatunków kruchych gwiazd szkielet przybiera raczej osobliwy kształt; soczewki. Te mikrosoczewki mają doskonały kształt, aby uniknąć aberracji sferycznych, a ich ognisko odpowiada skupiskom nerwów, które uważa się za fotoreceptory. Soczewki są przeznaczone do wykrywania światła pochodzącego z określonego kierunku, a chromatofory mierzą ilość światła, które może dotrzeć do fotoreceptorów. Soczewki te są nieobecne w kruchych gwiazdach obojętnych na światło i mogą działać jako oko złożone w tych, które to robią.

W hemichordates

Ostatnio biomineralizowane pierwiastki, których funkcja pozostaje nieznana, zostały znalezione w dwóch gatunkach hemichordatów z klasy enteropneustów . Obserwacje pod transmisyjnym mikroskopem elektronowym wydają się wskazywać, że formuje się ona jak szkarłupnie (ich grupa siostrzana) w zamkniętej przestrzeni otoczonej sklerocytami. W genomie gatunku znaleziono pewne geny kodujące białka odpowiedzialne za genezę kości szkarłupni, ale nie wiadomo jeszcze, czy biorą one udział w biomineralizacji hemichordatów.

W skorupiakach

W skorupiaki mają egzoszkielet zawierającą amorficzny węglan wapnia. Amorficzny węglan wapnia jest najmniej stabilną formą węglanu wapnia. Ta niestabilność jest możliwa dzięki włączeniu cząsteczek fosforanu, takich jak fosfofenolopirogronian i 3-fosfoglicerynian. Te półprodukty cyklu glikolizy miałyby zdolność wiązania chityny i amorficznego węglanu wapnia, aby stworzyć rusztowanie, które sprzyja tworzeniu się tego ostatniego zamiast tworzenia kalcytu lub aragonitu, które są znacznie bardziej stabilne i powszechne w organizmach biomineralizujących węglan wapnia.

Niektóre skorupiaki również tworzą gastrolity z tym samym minerałem (te gastrolity są tradycyjnie nazywane oczami raków ) i uważa się, że ta niestabilność umożliwiłaby skorupiakom łatwy dostęp do rezerw wapnia po linieniu. Gastrolity te są obecne w skorupiakach słodkowodnych, ponieważ są zagrożone Niedobór jonów. Obserwacje gastrolitów raków słodkowodnych Orconectes virilis wykazały, że były to silnie zwapnione zgrubienia naskórka przewodu pokarmowego i że podczas pierzenia naskórek ten pozostaje w przewodzie pokarmowym w celu strawienia; w ten sposób raki odzyskują zainwestowany wapń.

W mięczakach

W mięczaki wytworzenia bardzo skomplikowanych skorup z węglanu wapnia, jak kalcyt i / lub aragonit. Ich muszle są fascynujące dla badaczy, ponieważ łączą w sobie lekkość i wytrzymałość, ale jedną z ich najciekawszych cech jest masa perłowa. Masa perłowa to zespół wielokątnych płyt aragonitowych ułożonych jak cegły z polisacharydami i włóknami białkowymi, takimi jak zaprawa. Tworzenie się masy perłowej rozpoczyna się od zbudowania organicznej matrycy przez komórki płaszcza, w której będą się tworzyć kryształy aragonitu. Po utworzeniu tej struktury komórki płaszcza będą wydzielać niezbędne jony w celu wywołania tworzenia się kryształów z pewnej odległości wewnątrz matrycy. Ta matryca jest perforowana kilkoma porami, aby umożliwić przepływ tych jonów, a także umożliwić ciągłą krystalizację między płytami. Tak więc potrzeba znacznie mniej zdarzeń zarodkowania, a orientacja kryształów jest jednolita.

Chociaż macica perłowa jest charakterystyczną cechą mięczaków i można ją uznać za apomorfię tego kladu, nie występuje we wszystkich mięczakach. Na przykład niektóre małże mają warstwową formę kalcytu, w której można znaleźć macicę perłową, a monoplakofory mają postać warstwowego aragonitu. Te dwie formy węglanu tworzą raczej zestaw listew niż cegieł, jak prawdziwa masa perłowa.

W ramienionogach

W Ramienionogi mają muszle, które pozornie przypominają, że mięczaków. Na poziomie chemicznym istnieje pewne podobieństwo, takie jak obecność chityny, ale nie ma masy perłowej, a ramienionogi z klasy Lingulata tworzą muszle apatytu, formy fosforanu wapnia. Badanie genomu Lingula wykazało, że kilka genów regulujących biomineralizację jest wspólnych u zwierząt, takich jak chitynaza między mięczakami i Lingulą, co jest normalne, biorąc pod uwagę, że oba używają chityny w rusztowaniu ich muszli i wskazuje, że jest ona wspólna ze wspólnym przodkiem. Innymi interesującymi białkami są hefaestyna i hemicentrin, które są wspólne dla linguli i koralowców, ale są nieobecne w mięczakach lub kręgowcach, co oznacza wspólne pochodzenie i dwa zniknięcia tych białek zewnątrzkomórkowych, które wiążą jony, lub też podwójne pochodzenie tego układu.

U kręgowców

Szkielet kręgowca może być mniej lub bardziej zmineralizowany w zależności od taksonów, ale jeśli tak jest, składa się głównie z hydroksyapatytu , formy fosforanu wapnia. Komórki kontrolujące wzrost i utrzymanie kości to osteocyty i osteoklasty . Osteocyty (lub chondrocyty, jeśli szkielet nie jest zmineralizowany) mają dwa różne pochodzenie embrionalne: mezodermalne pochodzenie endoszkieletu, z wyjątkiem splachnocranonu, który pochodzi z grzebienia nerwowego, takiego jak szkielet skóry. Osteocyty są odpowiedzialne za odkładanie wapnia w kościach, a tym samym promowanie wzrostu kości; osteoklasty są odpowiedzialne za wchłanianie zwrotne kości w celu zwiększenia stężenia wapnia we krwi. Te dwa typy komórek reagują na dwa hormony, regulując ich aktywność: parathormon, który jest wydzielany w hiperkalcemii, stymuluje osteocyty i hamuje osteoklasty; i kalcytonina, która jest wydzielana w sytuacji hipokalcemii i ma odwrotny skutek. Biomineralizacja pełni zatem, oprócz swojej roli strukturalnej, także jonową rolę regulacyjną u kręgowców.

Wspólna ścieżka?

Obserwacja bakterii magnetoaktycznej doprowadziła do postawienia hipotezy, zgodnie z którą mechanizmy biomineralizacji pochodzą z kilku niezależnych egzaptacji mechanizmu przodków. Egzaptacje te zostałyby wywołane lub wybrane podczas eksplozji kambryjskiej . To wspólne pochodzenie wyjaśniałoby podobieństwa immunologiczne między substancjami biomineralnymi różnych taksonów zwierząt.

Ponieważ główne gałęzie zwierząt rozeszły się kilkaset milionów lat przed eksplozją (według zegarów molekularnych), a nawet dość silna siła selekcyjna nie wystarczyłaby do ponownego wynalezienia tak złożonych i podobnych systemów w tak wielu grupach, hipoteza ta zasługuje na rozważenie. jak prawdopodobne.

Pochodzenie może leżeć w układzie transportu jonów wapnia niezbędnym do tworzenia mikrotubul i obecnym u eukariotów oraz w systemie biomineralizacji magnetytu. Rzeczywiście wydaje się, że występuje w większości taksonów zwierząt, wydaje się bardzo stary i ma wspólny mechanizm transportu wakuolarnego z bakteriami magnetotaktycznymi.

Białka wewnętrznie nieuporządkowane

Tworzenie biominerałów jest kontrolowane przez określone białka wytwarzane przez organizm. Kilka z tych białek wiąże matrycę organiczną, jony minerałów lub jedno i drugie. Mówi się, że duża ilość tych białek jest wewnętrznie nieuporządkowana, ponieważ nie mają konfiguracji drugorzędowej ani trzeciorzędowej przed związaniem się ze swoim celem. Zamiast tego będą się skręcać w całkowicie przypadkowy sposób. Ten brak predefiniowanego kształtu zapewnia im elastyczność w wiązaniu z wieloma podłożami, ale po związaniu przyjmują bardziej standardowe konformacje. Na przykład białko fosforyny w obecności wapnia przyjmie konformację arkusza beta. Inne badanie, przeprowadzone przez Evansa i Chang (1994), wykazało, że struktura fosforyny była zależna od pH z powodu interakcji między naładowanymi regionami. Różne konformacje, które mogą przyjmować te białka, pomagają w biomineralizacji, ponieważ pomagają stabilizować związane substraty, jednocześnie utrzymując nieuporządkowany region w gotowości do wiązania się z czymś innym. Ich otwarta struktura pozostawia również miejsce na większą kontrolę komórki nad modyfikacjami potranslacyjnymi, takimi jak fosforylacja lub glikozylacja, aby umożliwić większą różnorodność struktur, a zwłaszcza ligandów.

Brak lub mutacja tych z natury nieuporządkowanych białek u zwierząt jest związana z chorobami wpływającymi na kości, zębinę i szkliwo, takimi jak Dentinogenesis imperfecta typu III i krzywica hipofosfatemiczna oporna na witaminy.

Etapy biosyntezy

Proces biosyntezy kryształów i ich składania przebiega w kilku etapach

  1. biokoncentracja określonych komórek lub przestrzeni w jonach mineralnych,
  2. gdzie stosowne, produkcja matrycy białkowej,
  3. zarodkowanie / krystalizacja,
  4. proces zatrzymywania wzrostu kryształu lub wytworzonej struktury (często kontrolowany sezonowo). Odgrywa ważną rolę, ponieważ zablokowanie zatrzymania wzrostu kryształu w jednym z tych punktów decyduje o jego ostatecznym kształcie i niektórych właściwościach mechanicznych i optycznych kryształów. To kontrolowane blokowanie jest na przykład aktywne w tworzeniu złożonych struktur płytkowych kokolithofhoridów , ale u wielu gatunków różne rodzaje kryształów po prostu przestają rosnąć biernie, gdy napotkają przeszkodę (może to być inny kryształ) lub organiczną matrycę (na przykład macierz międzywarstwowa, która kontroluje produkcję masy perłowej). W organizmach prymitywnych może być również kontrolowany przez wyczerpywanie niezbędnych składników mineralnych
  5. ostatnim krokiem (w gatunkach, które są do tego zdolne) może być konserwacja lub naprawa materiału, gdy ulegnie zniszczeniu.

Koszty energii

Biosyntetyzacja minerałów ma koszt energii dla zwierzęcia, ale jest znacznie niższy niż w przypadku metod przemysłowych stosowanych przez ludzi i nie wymaga węglowodorów kopalnych ani innych źródeł energii (bezpośrednich lub pośrednich) niż słońce.

Według Palmera (1992) koszty energii związane z biomineralizacją pochodzą głównie z:

Do użytku przez ludzi

Minerały tworzone przez organizmy żywe mogą mieć szczególne zastosowanie w detektorach magnetycznych (Fe 3 O 4 ), detektorach grawitacyjnych (CaCO 3 , CaSO 4 , BaSO 4 ) lub do magazynowania i mobilizacji żelaza (Fe 2 O 3. H 2 O).

Biomimetycznego i bardzo zainteresowane procesem, w szczególności dlatego, że są realizowane przy bardzo niskich kosztach energii (w porównaniu do tych zmobilizowanych przez ludzkie procesów przemysłowych), bez konieczności kosztowne i rzadko jako katalizatory, które są wykorzystywane przez „przemysł, a ponieważ są one czasami wytwarzane przez zwierzęta żyjące w środowisku pozornie niekorzystnym dla wytrącania się użytych minerałów. Więc :

Uwagi i odniesienia

  1. Marie B (2008) Evolution of perly biomineralizations in Molluscs: Molecular characterization of shell matrix of the nautiloid headopod onutilus macromphalus and of the paleoheterodont bivalve Unio pictorum (rozprawa doktorska, University of Burgundy, PDF, 291 stron)
  2. Biomineralizacja: od natury do zastosowania, redaktorzy Astrid Sigel, Helmut Sigel i Roland KO Sigel
  3. Biominerały i skamieniałości w czasie , autor Jean-Pierre Cuif, Yannicke Dauphin, James E. Sorauf
  4. Borowitzka MA (1982) Morfologiczne i cytologiczne aspekty zwapnienia glonów. Int. Obrót silnika. Cytol. 74, 127-160
  5. Lowenstam HA (1954) Zależności środowiskowe między modyfikacjami składu niektórych bezkręgowców morskich wydzielających węglany . Zool. 40, 39–48
  6. Mitsunaga K., Akasaka K., Shimada H., Fujino Y., Yasumasu I. & Numanoi H. (1986) Carbonic anhydrase activity in development zarodków jeżowca morskiego ze szczególnym odniesieniem do wapnienia drzazg . Cell Differ. 18, 257-262
  7. Meenakshi VR, Martin AW i Wilbur KM (1974) Naprawa skorupy w Nautilus macromphalus . Mar. Biol. 27, 27-35
  8. Ingo Sethmann i Gert Wörheide , „  Struktura i skład spicules z gąbki wapiennej: przegląd i porównanie do strukturalnie powiązanych biominerałów  ”, Micron , vol.  39, n o  3,1 st kwiecień 2008, s.  209–228 ( DOI  10.1016 / j.micron.2007.01.006 , czytaj online , dostęp 17 listopada 2016 )
  9. Xiaohong Wang , Matthias Wiens , Heinz C. Schröder i Ute Schloßmacher , „  Evagination of Cells Controls Bio-Silica Formation and Maturation during Spicule Formation in Sponges  ”, PLOS ONE , vol.  6, n O  6,2 czerwca 2011, e20523 ( ISSN  1932-6203 , PMID  21655099 , PMCID  3107217 , DOI  10.1371 / journal.pone.0020523 , czytaj online , dostęp 17 listopada 2016 )
  10. (w) Gretchen Lambert , „  Ultrastrukturalne aspekty treningu kolców w samotnym Ascidian Herdmania momus (Urochordata, Ascidiacea)  ” , Acta Zoologica , vol.  73, n o  4,1 st październik 1992, s.  237–245 ( ISSN  1463-6395 , DOI  10.1111 / j.1463-6395.1992.tb01088.x , czytaj online , dostęp 17 listopada 2016 )
  11. (w) Gretchen Lambert i Charles C. Lambert , „  Extracellular Formation of Body and Tunic spicules in the New Zealand Solitary Ascidian Pyura pachydermatina (Urochordata, Ascidiacea)  ” , Acta Zoologica , vol.  78, n o  1,1 st styczeń 1997, s.  51–60 ( ISSN  1463-6395 , DOI  10.1111 / j.1463-6395.1997.tb01126.x , czytaj online , dostęp 17 listopada 2016 )
  12. BT Livingston , CE Killian , F. Wilt i A. Cameron , „  Analiza całego genomu białek związanych z biomineralizacją w jeżowcu Strongylocentrotus purpuratus  ”, Developmental Biology , Sea Urchin Genome: Implications and Insights, vol.  300 n o  1,1 st grudzień 2006, s.  335–348 ( DOI  10.1016 / j.ydbio.2006.07.047 , odczyt online , dostęp 17 listopada 2016 )
  13. (w) Joanna Aizenberg , Alexei Tkachenko Steve Weiner i Lia Addadi , „  Kalcytowe mikrosoczewki jako udział systemu fotoreceptorów w kruchych gwiazdach  ” , Nature , vol.  412 n O  6849,23 sierpnia 2001, s.  819–822 ( ISSN  0028-0836 , DOI  10.1038 / 35090573 , odczyt online , dostęp 17 listopada 2016 )
  14. (w) CB Cameron i CD Bishop , "  Ultrastruktura bioMineralna, konstytucja pierwiastkowa i analiza genomowa białek związanych z biomineralizacją w hemichordatach  " , Proceedings of the Royal Society of London B: Biological Sciences , vol.  279 n O  1.7407 sierpnia 2012, s.  3041–3048 ( ISSN  0962-8452 i 1471-2954 , PMID  22496191 , PMCID  3385480 , DOI  10.1098 / rspb.2012.0335 , czytaj online , dostęp 17 listopada 2016 )
  15. Dorothy F. Travis , „  Depozycja struktur szkieletowych w skorupiakach. ja. histologia kompleksu tkanki szkieletowej gastrolitu i gastrolitu u raków, orconectes (cambarus) virilis hagen - decapoda  ”, Biological Bulletin , vol.  118 n o  1,1 st lutego 1960, s.  137–149 ( ISSN  0006-3185 , DOI  10.2307 / 1539064 , czytaj online , dostęp 17 listopada 2016 )
  16. (in) Sato, A., Nagasaka, „  glikolityczne półprodukty Indukują bezpostaciowe tworzenie węglanu wapnia w skorupiakach  ” , Nature ,2011
  17. (w) Antonio G. Checa , Joaquín Ramírez Rico , Alicia González-Segura i Antonio Sanchez-Navas , „  Nacre and false nacre (aragonite foliated) in extant monoplacophorans (= Tryblidiida: Mollusca)  ” , Naturwissenschaften , vol.  96, n o  1,9 października 2008, s.  111–122 ( ISSN  0028-1042 i 1432-1904 , DOI  10.1007 / s00114-008-0461-1 , czytaj online , dostęp 17 listopada 2016 )
  18. (w) Addadi, L. i Weiner, S., „  biomineralization: A pavement of pearl  ” , Nature ,1997
  19. (w) Luo Yi-Jyun, et al., „  The genome Lingula zapewnia wgląd w ewolucję ramienionogów i pochodzenie biomineralizacji fosforanów  ” , Nature ,2015
  20. (w) Philip Conrad James Donoghue , Ivan James Sansom i Jason Philip Downs , „  Wczesna ewolucja tkanki szkieletowej kręgowców i interakcji komórkowych oraz kanalizacja rozwoju szkieletu  ” , Journal of Experimental Zoology Part B: Molecular and Developmental Evolution , vol.  306B, n O  3,15 maja 2006, s.  278–294 ( ISSN  1552-5015 , DOI  10.1002 / jez.b.21090 , czyt. Online , dostęp 17 listopada 2016 )
  21. (in) GL Wong i DV Cohn , "  Komórki docelowe w kości dla parathormonu i kalcytoniny są różne: wzbogacenie Dla każdego typu komórek poprzez sekwencyjne trawienie mysiej sklepienia czaszki i selektywne przyleganie do powierzchni polimerowych  " , Proceedings of the National Academy of Sciences , vol.  72 N O  8,1 st sierpień 1975, s.  3167–3171 ( ISSN  0027-8424 i 1091-6490 , PMID  171656 , PMCID  432942 , czytaj online , dostęp 17 listopada 2016 )
  22. (w) Kirschvink, JL i Hagadorn, JW, „  Wielka zunifikowana teoria biomineralizacji  ” , Biomineralizacja Nano i Mikro-Struktur ,2000
  23. Adele L. Boskey i Eduardo Villarreal-Ramirez , „  Wewnętrznie nieuporządkowane białka i biomineralizacja  ”, Matrix Biology , matrix in Mineralized Tissues, tom.  52–54,1 st maja 2016, s.  43–59 ( PMID  26807759 , PMCID  4875856 , DOI  10.1016 / j.matbio.2016.01.007 , czytaj online , dostęp 17 listopada 2016 )
  24. Girinsky, O. (2009) Preindustrializacja procesu konsolidacji gleby przez biowapnienie in situ (rozprawa doktorska, University of Angers).
  25. Ducasse-Lapeyrusse, J., Gagné, R., Lors, C. i Damidot, D. (2014). Obróbka zapraw popękanych przez biokatryzację: w kierunku ilościowej oceny skuteczności bakteryjnej. Materiały i techniki, 102 (1), 105 ( podsumowanie )

Zobacz też

Powiązane artykuły

Link zewnętrzny

Bibliografia